补充酿酒酵母及其发酵产物对围产期奶牛生产性能的影响及其机制

摘要：本研究的目的是研究酿酒酵母及其发酵产物对围产期奶牛生产性能、血液激素水平和瘤胃花成分的影响。选择 60 头围产期奶牛，根据胎次和预产期分为两组。每组补充酿酒酵母及其发酵产物0或100 g。结果表明，酿酒酵母其发酵产物能显着增加围产期奶牛的采食量（P < 0.01），产后21天后乳糖含量增加（P < 0.01），并有增加产奶量的趋势（P = 0.052）。对其他乳成分、营养物质的表观消化率没有显着影响。有增加牛奶产量和减少牛奶中体细胞数量的趋势；增加血液中胰高血糖素（P < 0.01）和β-羟基丁酸盐（P = 0.01）的水平，降低胰岛素含量（P = 0.02）。酿酒酵母降低了围产期奶牛瘤胃微生物的丰度，但对瘤胃微生物多样性没有影响。与对照组相比，补充组的属丰度降低 芽孢杆菌(P = 0.03)、丁酸弧菌(P = 0.01)、脱硝杆菌(P = 0.01) 和Mogibacterium (P < 0.01)、卟啉单胞菌( P = 0.05)、酵母菌(P < 0.01)、球菌(P = 0.02)、链球菌(P = 0.04) 和其他属。Acidaminococcus ( P = 0.03)、Allisonella (P < 0.01)、Bulledia (P < 0.01)、Corynebacterium (P = 0.01)、Dialister (P < 0.01)、Faecalibacterium ( P = 0.02)、Faekalitalea (P = 0.03),纤维杆菌属(P = 0.04)、黄杆菌属(P = 0.03)、坎德勒菌属(P < 0.01)、副普氏菌属(P < 0.01)、锥菌属( P = 0.05)、罗氏杆菌属(P < 0.01)、琥珀弧菌属(P < 0.01)等属。确定了围产期奶牛的主要代谢途径，如色氨酸代谢和类固醇激素的生物合成。酿酒酵母及其发酵产物。

关键词

.酿酒 酵母,围产期,奶牛,生产 性能,机理;

一、简介

围产期也称为过渡期。这是从母牛怀孕后期到泌乳开始的时期。一般指奶牛围产期21天至产后21天[ 1]。它的特点是泌乳需要大量能量。但是，由于采食量过低引起的能量负平衡，导致身体大量调动体内脂肪，脂肪在肝脏周围过度堆积，导致脂肪肝的发生。同时，脂肪代谢导致酮体含量增加，引起酮症。这严重影响了奶牛正常的生殖和消化生理，扰乱了营养物质的代谢，调节了神经内分泌，进而导致营养代谢紊乱甚至生病。这些将降低奶牛在下一个泌乳周期的表现。酿酒酵母可通过其代谢产物刺激反刍动物瘤胃微生物，调节微生态平衡，促进有益菌生长，达到提高生产性能的目的。酿酒酵母还能改善瘤胃发酵，提高饲料消化率和利用效率，微生物数量和活力，增强免疫力。瘤胃菌群影响宿主生产性能。肉牛的饲料转化效率与瘤胃微生物群落结构密切相关，这在许多研究中都有体现[ 2 ][ 3 ]。Jami 认为，乳脂产量与 F/B 呈显着正相关（Copticella 和Bacteroides的比例）) 并且与拟杆菌属下的间日疟原虫显着负相关[ 4 ]。

在奶牛日粮中添加酿酒酵母可增加泌乳奶牛干物质采食量、产奶量[ 5 ]，增加纤维素酶的相对活力，促进瘤胃中饲料中纤维素的降解。酿酒酵母降低瘤胃 pH [ 5 ] 和氨氮浓度。同时，研究表明，酵母可以促进其他瘤胃微生物的增殖[ 6 ]，减少牛奶中的体细胞数量，并能吸附毒素、病原菌和降解黄曲霉毒素等。但也有研究表明酿酒酵母对围产期奶牛的干物质摄入没有影响[7 ]，或只能增加产前采食量对产后采食量没有影响[ 8 ]，对总消化干物质、细胞壁组成和氮消化率没有影响。

本研究的目的是确定在围产期奶牛添加酵母的真实效果和机制。本研究结果希望进一步确定酵母在奶牛围产期的作用，对生产具有重要的指导意义。

2。材料和方法

2.1。试验动物

选取围产期荷斯坦奶牛60头，按预产期（2±0.69）分为两组。每组30头。试用期从每头奶牛预产期前21天开始至产后21天，共约42天。围产期奶牛在试验期间每天 7:00 和 19:00 饲喂全混合日粮 (TMR)。在7:30和19:30，TMR被喂给围产期的奶牛并挤奶。他们每天 24 公顷都可以自由地吃喝。酿酒酵母将其发酵物加入TMR中，两个试验组每天0、100克喂食。奶牛在预产期前21天冲入围产场，预产期前7天进入产房，产后1天冲入护理棚，产后7天进入新生牛舍。

2.2. 饮食

表 1显示了饮食的配方和组成。

物品

产前

产后

膳食成分（公斤）

玉米青贮饲料

16.0

18.0

苜蓿干草

4.5

野生黑麦干草

4.0

0.5

棉籽

1.6

浓缩补充剂

6.0

10.9

脂肪粉

0.2

苏打

0.15

营养素 (%)

DM

47.8

47.7

CP

11.6

14.3

EE

5.5

3.6

NDF

48.4

45.8

ADF

24.3

23.3

灰

8.0

10.3

酸不溶灰

1.6

1.0

内尔

14.71

14.73

表 1。饮食的配方和组成。

注：NEL = GE × [94.280 - 61.5730 (NDF/OM)] × 0.5501 - 0.395。

2.3. 样品采集

记录每天喂食的TMR量和剩余材料量。每周收集 TMR 样品并置于 65℃ 的电动恒温鼓风干燥机中至恒重，并在 24 小时回潮后粉碎。在奶牛放入冰箱后的第19天、第20天和第21天早上喂食前从直肠取出奶牛，并储存在冰箱中。记录三天的产奶量，混合牛奶后测量牛奶的成分。产后21天早晨，奶牛从尾静脉取血10ml，离心取血清冷冻保存。通过食道抽取100毫升瘤胃液。经过4层纱布过滤后，其中一部分用偏磷酸冷冻保存，另一部分储存在液氮中。转移到 -80˚C 冰箱中长期储存。

2.4. 测定方法

TMR和粪便样品的干物质测定按GB6435-86的方法进行；粗蛋白按凯氏定氮法（GB/T 6432-94）测定；粗灰分的测定按GB/T 6438-86的方法进行；粗脂肪含量按GB/T 6433-2006的方法进行；中性洗涤纤维和酸性洗涤纤维按Van Soest（1991）提出的方法进行；酸不溶性灰分按GB/T 23742-2009的方法进行；热量计（6200，PARR）测定；使用 Elisa 试剂盒测定血液激素和生物活性物质。

2.5. 统计分析

数据基础处理采用Excel 2007软件，结果采用SAS 8.2单因素方差分析。

3. 结果

3.1。酿酒酵母及其发酵产物对围产期奶牛养分表观消化率的影响

表 2显示了围产期奶牛各种营养物质的表观消化率。通过检测营养物质的表观消化率可以看出，围产期饲喂酿酒酵母及其发酵产物对奶牛营养物质的表观消化率没有显着影响，只是提高了粗脂肪的消化率（P = 0.08） .

3.2. 对围产期奶牛泌乳性能和 DMI 的影响

如表3所示，围产期补充益生菌

表观消化率 (%)

控制

实验

扫描电镜

P值

CP

76.19

72.06

0.02

0.16

ADF

59.11

55.52

0.02

0.42

NDF

70.65

65.08

0.01

0.17

EE

81.57

86.55

0.02

0.08

表 2。营养成分的表观消化率。

物品

控制

实验

扫描电镜

P值

DMI (公斤/天)

19.65

21.79

0.26

<0.01

产奶量（公斤/天）

33.21

36.61

1.37

0.06

乳脂率（%）

3.37

3.39

0.25

0.97

乳脂产量（公斤/天）

1.13

1.20

0.03

0.28

乳蛋白率（%）

3.37

3.28

0.06

0.32

乳蛋白产量（kg/d）

1.10

1.23

0.07

0.34

乳糖率 (%)

4.69

4.88

0.03

<0.01

体细胞数（万/ml）

20.51

15.1

6.93

0.53

表 3。围产期奶牛的产奶性能和 DMI。

DMI（P < 0.01）和产后乳糖含量（P < 0.01）显着增加，产奶量有增加趋势（P = 0.052），但对其他乳成分无显着影响。

3.3. 酿酒酵母及其发酵产物对围产期奶牛血液生化指标的影响

从表4可以看出，试验组的β-羟基丁酸含量显着增加（P=0.01）。同时，益生菌制剂显着增加血清胰高血糖素含量（P < 0.01），显着降低胰岛素含量（P = 0.0225），但对其他激素无显着影响。

3.4. 酿酒酵母及其发酵对围产期奶牛瘤胃脂肪酸的影响

由表5可以看出，试验组丁酸和异戊酸含量显着增加（P<0.01，P=0.02）。同时，戊酸含量显着下降。

3.5. OTU 维恩图分析

两组共检测到 1726 个 OUT。对照组（PC）共有1639个OTU，其中293个OTU是对照组独有的。测试组（PE）共有 1433 个 OTU，其中 87 个 OTU 是测试组独有的。两个治疗组共有 1346 个 OTU（图 1）。

物品

中心

实验

扫描电镜

P值

IGF-1 (微克/升)

150.89

142.36

2.26

0.06

葡萄糖素 (ng/L)

63.74

69.57

1.05

<0.01

胰岛素 (μ/L)

11.99

10.47

0.34

0.02

皮质醇（微克/升）

85.95

90.66

1.54

0.13

催乳素 (ng/L)

740.33

761.46

9.93

0.3

NIFA (微摩尔/升)

379.09

389.33

3.89

0.20

β-羟基丁酸 (μmol/L)

0.63

0.71

0.01

0.01

瘦素（微克/升）

7.55

7.39

0.08

0.30

生长激素（微克/升）

20.51

21.28

0.31

0.72

肿瘤坏死因子-a (ng/L)

31.63

31.28

0.62

0.79

表 4。益生菌对围产期奶牛血液生化指标的影响。

物品

控制

实验

扫描电镜

P值

乙酸 (mmol/L)

52.05

48.86

1.02

0.12

丙酸 (mmol/L)

16.50

17.34

0.40

0.31

丁酸 (mmol/L)

6.48

10.57

0.57

<0.01

异丁酸 (mmol/L)

0.52

0.56

0.01

0.07

戊酸 (mmol/L)

1.27

0.81

0.06

<0.01

异戊酸 (mmol/L)

1.09

1.36

0.06

0.02

表 5。围产期奶牛的挥发性脂肪酸。

图 1。OUT 维恩图。

3.6. OTU PCA 分析

PCA 分析显示（图 2）两组分布在两个位置。距离很远，几乎没有重叠，表明它们的花成分有很大不同。相对而言，红色对照组（PC）的数据分布较为离散，说明对照组存在较大偏差。

图 2。基于 OTU 丰度的 PCA 分析（按描述分组）。

3.7. OTU等级曲线

图 3显示两个处理组包含许多常见的 OTU，并且这部分 OTU 在每组样本中都很丰富。相对而言，对照组的样本大多分布在测试组之上。它的曲线似乎更早地稳定下来。这表明向围产期奶牛补充酿酒酵母及其发酵产物可能会降低瘤胃中的微生物丰度。

3.8. 物种注释分析

通过与数据库的比较，将 OTU 分类为物种，并为每个样本在几个分类级别上进行分析直方图：门、类、目、科、属和种。所有物种的门水平直方图水平显示在列中。从类级别开始，将所有样本中丰度低于 0.5% 的物种合并到“其他”类别中。

图 4是检测到的门的直方图。本次实验共发现细菌门14个，其中4个大于1%：拟杆菌门、厚壁菌门、变形菌门和螺旋体门。拟杆菌门和变形菌门中的硬壁细菌约占微生物总数的90%，其中8.4%（对照组）和11.5%（试验组）的微生物未鉴定。在 14 个门中，试验组的

图 3。OTU 等级曲线。注：横坐标为样品的 OTU 丰度（从高到低），纵坐标为 OTU 丰度。

图 4。门级样本中的直方图。

念珠菌属、糖杆菌属(P = 0.01)、浮孢菌属(P < 0.01)、疣微菌属(P < 0.01)，而纤维杆菌属(P = 0.01)的含量显着增加。

图 5是类的直方图。实验共发现细菌24类。共有 5 类贡献超过 1%，包括拟杆菌、梭菌、γ-变形菌、负菌和螺旋体。在

图 5。微生物区系的分类概况。

24个类别中，试验组Coriobacteriia（P < 0.01）、Planctomycetia（P < 0.01）、Verrucomicrobiae（P < 0.01）含量显着降低，而Erysipelotrichia含量显着增加（P = 0.01），纤维杆菌的含量也显着增加（P = 0.04）。

图 6是订单的直方图。本次测试共检测到4个订单。共有 6 类贡献超过 1%，包括酸氨基球菌目、拟杆菌目、梭菌目、乳杆菌目、假单胞菌目和螺旋体目。4目中，试验组芽孢杆菌目（P = 0.04）、浮孢菌目（P < 0.01）、疣状微生物目（P < 0.01）含量显着降低，气单胞菌目含量显着增加（P < 0.01） )、棒状杆菌目 (P = 0.01)、丹毒菌目 (P < 0.01)、纤维杆菌目(P = 0.04)、巴氏杆菌目 (P = 0.02) 和韦荣菌目 (P < 0.01)。

图 7是家庭的直方图。本次实验共检出7个细菌科。共有8个贡献超过1%，包括酸氨基球菌科、肉杆菌科、毛螺菌科、莫拉菌科、紫单胞菌科和普氏菌科、瘤胃球菌科、螺旋体科。7个科中，试验组芽孢杆菌科（P = 0.04）、梭菌目_Family_XIII、Incertae_Sedis（P < 0.01）、Eggerthellaceae（P < 0.01）、瘤胃球菌科（P = 0.01）、链球菌科（P = 0.04), Verrucomicrobia_subdivision_5 (P < 0.01)。棒杆菌科（P = 0.01）、丹毒科（P = 0.01）、纤维杆菌科（P = 0.04）、巴氏杆菌科（P = 0.02）、琥珀弧菌属含量显着增加naceae (P < 0.01) 和 Veillonellaceae (P < 0.01)。

图 8是属水平的分类群直方图。与对照组相比，试验组芽孢杆菌（P=0.03）、丁酸弧菌（P=0.01）、反硝化杆菌（P=0.01）、多杆菌（P<0.01）、卟啉单胞菌（P = 0.05）、发酵糖(P < 0.01) 、球菌属( P = 0.02)、链球菌属(P = 0.04)等属。

图 6。订单级分类群的概况。

图 7。植物群中细菌家族的概况。

图 8。微生物区系中的属概况。

Acidaminococcus ( P = 0.03)、Allisonella (P < 0.01)、Bulledia (P < 0.01)、Corynebacterium (P = 0.01)、Dialister (P < 0.01)、Faecalibacterium ( P = 0.02)、Faekalitalea (P = 0.03), Fibrobacter (P = 0.04), Flavobacterium (P = 0.03), Kandleria (P < 0.01), Paraprevotella (P < 0.01), Pyramidobacter (P = 0.05), Roseburia (P < 0.01), Succinivibrio (P < 0.01) 等属。

3.9. 样本多样性分析

如图9所示，对照组的观察物种（obs）、chao值、ace值均高于试验组，说明试验组物种丰度低于对照组。在香农指数和辛普森指数方面，两组之间没有显着差异。但是可以看出，测试组的曲线分布在测试组的两侧。也就是说，与试验组相比，对照组的物种丰度存在显着差异。我们也可以从表 6提供的数据和统计数据中得出相同的结论. 围产期补充益生菌显着降低了奶牛瘤胃微生物的丰度，但对微生物多样性没有显着影响。

3.10。对瘤胃代谢物和途径的影响

使用质谱仪 Xevo G2-XS QTOF (Waters, UK) 获取质谱数据。使用商业化软件 Progenesis QI (version 2.2) (Waters, UK) 对质谱数据进行统计分析。代谢物鉴定基于数据库 KEGG。使用多变量 PLS-DA 模型的前两个主要成分的 VIP 值并结合倍数变化和 q 值值的单变量分析来筛选差异表达的代谢物。筛选条件为：1）VIP≥1；2）倍数变化≥1.2或≤0.8333；3) q 值 < 0.05。满足这三个标准的离子被认为是差分离子。代谢途径分析基于数据库 KEGG（表 7）。

3.11。单变量分析

该检验通过T检验和倍数变化分析（FC分析）进行分析。在里面

＃Α

控制

标清

实验

标清

p值

啜泣

905.50

163.69

736.30

132.41

0.02

超

1081.619

157.36

911.18

138.26

0.02

高手

1080.67

157.61

899.67

134.84

0.02

香农

4.68

0.73

4.40

0.30

0.08

辛普森

0.05

0.04

0.05

0.01

0.12

表 6。围产期奶牛微生物的阿尔法多样性。

图 9。样品中α多样性的稀疏曲线。

差异代谢途径

带注释的代谢物编号

泛醌等萜类化合物的生物合成

17

酪氨酸代谢

13

药物代谢-细胞色素P450

14

苯丙氨酸代谢

15

色氨酸代谢

26

神经活性配体-受体相互作用

12

外来化合物的细胞色素 P450 代谢

11

花生四烯酸代谢

17

类固醇激素生物合成

20

化学致癌

12

2-氧代环戊烷甲酸甲酯

17

α-亚麻酸代谢

12

氨基酸生物合成

10

表 7。围产期奶牛的主要差异代谢途径。

统计分析，将统计检验产生的p值进行FDR校正，得到q值。最终结果以火山图的形式呈现了两个指标，即倍数变化和 q 值。倍数差异 ≥ 1.2 或 ≤0.8333 且 q 值 < 0.05 的代谢物被认为是差异的。图 10分别显示了阳离子和阴离子模式下的火山图。

3.12。偏最小二乘判别分析

偏最小二乘判别分析（PLS-DA）是一种有监督的判别分析统计方法，最能反映分类组之间的差异。该方法利用偏最小二乘回归建立代谢物表达与样本类别之间的关系模型，对样本类别进行建模和预测。从图11可以看出，对照组和试验组的代谢产物有显着差异。

3.13。差异代谢物分离和鉴定

图 12显示了阳离子和阴离子模式的差分离子聚类分析。筛选结果显示差异阳离子639个，其中上调401个，下调238个。阴离子模式共鉴定出657个差分离子，其中上调469个，下调188个。

3.14。鉴别代谢途径

代谢途径分析有助于了解代谢物参与的主要生化代谢途径和信号转导途径。该项目中代谢物代谢途径的注释是

图 10。阳离子和阴离子的火山图。注：横坐标为 log 2（倍数变化），纵坐标为 -log10（q 值）。倍数变化小于或等于0.8333，或大于或等于1.2，q值<0.05的数据点绘制为红色，其他为蓝色。

图 11。阳离子模式和阴离子模式的PLS-DA判别分析模型。注：横坐标代表第一主成分 PC1。纵坐标代表第二主成分PC2。图中的每个点代表一个样本。双色符号的分散程度代表两组样本在PC1和PC2轴上的分布趋势。

基于 KEGG 数据库。本实验共检测到109条差异代谢途径。选择在阳离子和阴离子模式下具有一致结果的代谢途径，以及大于 10 的代谢物的注释数量如下选择。

图 12。差异阳离子和阴离子的聚类分析。注意：图中的每一行代表一个差分离子。每列代表一个样本，颜色从绿色到红色表示强度从低到高。

4。讨论

酿酒酵母及其发酵产物对生产性能的影响

本实验中，饲喂酿酒酵母及其发酵产物对产后奶牛营养物质的表观消化率没有显着影响。这与一些文献结果相反，但与近年来的许多研究一致。Zaworski 在围产期奶牛日粮中添加酵母发酵，发现酵母发酵添加量对各项检查指标无显着影响[ 9]。在我们的试验中，与对照组相比，试验组产奶量增加了5.2±2.3 kg/d，显着增加了乳蛋白和乳糖含量，减少了乳汁中的体细胞数量，降低了产后胰岛素水平。 . 添加益生菌对营养物质的消化率没有显着影响。补充酿酒酵母及其发酵产物后，产后奶牛的DMI显着提高。这与 Dann 和 Yuan [ 10 ]的研究结果一致。然而，Arambel、Swartz 和 Robinson 的研究表明，酵母不会影响围产期奶牛的采食量 [ 11 ] [ 12 ] [ 13 ]。

Zaworski 认为，酵母发酵的独特香气是促进奶牛饲喂的重要因素，尤其是在饲料质量低、食欲低的情况下[ 9 ]。另一种可能性是酵母发酵可以改善饮食变化引起的压力。这解释了为什么泌乳前奶牛的采食量没有显着变化以及类似试验的不同结果。因为酵母发酵能否促进采食量也与饲料质量和个体差异有关。酵母发酵对干物质摄入的作用机制尚无定论，需要更多的数据支持。喂养酿酒酵母其发酵产物可显着提高围产期奶牛产后乳中的乳糖含量，并趋于增加产奶量，但对其他乳成分无显着影响。实验组粗脂肪消化率增加，其他营养物质消化率差异不显着。这也说明酵母可以促进人体的能量利用。补充饲喂酿酒酵母及其发酵产物可显着降低乳蛋白含量（P < 0.01）。补充酿酒酵母后及其发酵产物，牛奶中的体细胞数量减少，但统计结果不显着（P=0.75）。这可能是由于组内差异很大。对其他牛奶成分没有显着影响。

酿酒酵母及其发酵产物对血清激素水平的影响

补充酿酒酵母及其发酵产物可以增加奶牛胰高血糖素和β-羟基丁酸的含量，降低胰岛素的含量。同时，补充酿酒酵母及其发酵产物也降低了泌乳奶牛的游离脂肪酸含量，降低了瘦素含量。胰高血糖素与胰岛素相互拮抗，调节动物体内糖代谢的平衡，进而影响能量代谢。作为β-羟基丁酸的来源，瘤胃发酵产生的丁酸被瘤胃上皮转化。然而，之前的一些研究表明，酵母不会增加瘤胃丁酸的含量，无论是在体内[14 ]或体外[ 13 ]，这与本研究结果不一致。β-羟基丁酸的另一个重要来源是在泌乳前肝脏的生酮作用。为了满足妊娠和哺乳期的能量需求，奶牛需要从脂肪组织中调动大量甘油三酯，以甘油和游离脂肪酸的形式流入血液 [ 1] 并参与肝脏中的糖异生或再生甘油三酯。因此，血液中的游离脂肪酸反映了脂质动员的强度。虽然它是重要的能量来源和乳脂的前体，但过多的游离脂肪酸会增加肝脏的负担。游离脂肪酸的 β 氧化可产生乙酰辅酶 A。乙酰辅酶A的氧化在哺乳前受到限制，因为糖异生和克雷布斯循环都在线粒体中竞争草酰乙酸[ 15 ]。产生游离脂肪酸的一种方式是脂肪酸的不完全氧化。它可以用于功能。然而，当浓度过高时，游离脂肪酸会影响免疫和代谢功能，并增加感染和代谢紊乱的风险 [ 16]。

如OTU venn图所示，两组共检测到1726个OUT。对照组有1639个OTU，其中293个OTU是对照组独有的。测试组共有1433个OTU，其中87个OTU是测试组独有的。两个治疗组共有 1346 个 OTU。一般认为，一个OTU对应于自然界中实际存在的一个物种。通过对主成分和Alpha多样性的分析，我们也可以得到同样的结论。围产期补充益生菌可显着降低奶牛瘤胃微生物丰度，但对微生物多样性无显着影响。Jami 报道大量瘤胃细菌种类的丰度与泌乳产量或饲养效率高度相关[4 ]。这意味着细菌群落在调节宿主生理参数方面发挥着重要作用。一些研究表明，添加酵母对纤溶菌的丰度有影响 [ 17 ]，对利用乳酸的细菌有影响 [ 18 ] [ 19 ]。然而，在补充酿酒酵母时，没有人研究过未知细菌丰度、已知细菌丰度和生产性能之间的关联[ 20 ]。

在瘤胃内容物的固体和液体成分中，普氏菌是最丰富的细菌，约占总菌群的 42% 至 60% [ 20 ]。目前的研究表明，普氏菌与干物质摄入量和乳脂百分比呈负相关 [ 4 ]。它们与剂量和活力无关，酵母补充剂对普氏菌没有影响，无论是固体还是液体 [ 22 ]。在固相瘤胃含量和液相瘤胃含量中，芽孢杆菌属的相对丰度与乳脂百分比和干物质摄入量呈正相关。这反映了F. succinogenes的存在，瘤胃中主要的纤维分解细菌 [ 21 ]。然而，我们不知道为什么固相瘤胃内容物中纤维蛋白的相对丰度与产奶量呈负相关。在固相和液相中，纤维蛋白属与乳蛋白的比例呈正相关。特别是，酵母不会改变纤维蛋白属的相对丰度。在瘤胃固相含量中，瘤胃球菌的相对丰度与酸性洗涤纤维的降解率呈正相关。瘤胃液含量与干物质摄入量和乳脂百分比呈正相关。这可能是由于R. albus和R. flavefaciens分解纤维所致。

5. 结论

补充饲喂酿酒酵母及其发酵产物可显着增加围产期奶牛采食量，产奶量增加5.2%±2.3 kg/d，体细胞数量减少。此外，可增加产后乳糖含量，增加血中胰高血糖素和BHBA水平，增加泌乳早期瘦素含量，但显着降低胰岛素含量。Saccharo myces cerevisiae的补充喂养其发酵产物能显着提高围产期奶牛瘤胃液中酸和异戊酸的含量，降低戊酸的含量。产后 21 天瘤胃微生物丰度降低，但对微生物多样性没有影响。同时，芽孢杆菌的含量显着增加，而真菌和念珠菌的含量下降。

致谢

本研究得到山东省重点研发计划专项资金（2019JZZY010704）的资助，感谢与山东碧蓝生物科技公司的合作。国家重点研发计划项目（2017YFD0500502）、山东省畜牧产业技术研究系统（SDAIT-12-011-06）、国家自然科学基金项目（31572427）（31372340）和泰山学者项目。

利益冲突

作者声明与本文的发表没有利益冲突。

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